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镇痛药物实验热板法（小鼠）
原理：小鼠的足底接触热板，受热刺激而产生疼痛反应（舔后足），以产生痛反应所需的时间（潜伏期）为痛阈值，通过测量给药小鼠痛阈值的改变（潜伏时间的长短）而反映药物的镇痛作用。材料：动物 18～22g，雌性小鼠，器材 YLS-6B智能热板仪、注射器、生理盐水、盐酸**。方法：①打开热板仪，将温度设定到55℃±0.2℃，温度到达后即可实验。②筛选合格小鼠舔后足时间小于5秒或大于30秒或跳跃者弃之不用。③方
2020-09-03 vgv17614350 1197
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福尔马林致痛实验方法
实验方法:1.1动物分组及处理将SD大鼠随机分为A\B两组各式各10只,A组(对照组)注射100µl的生理盐水;B组(模型组)均于右足底皮下注射5%福尔马林100µl,其中,出现典型鼠尾侧向甩动和抖动视为致痛模型制作成功.1.2疼痛行为学观察将A B两组注射完毕后立即放入痛疼自动分析系统的有机玻璃箱中,点击痛疼自动分析系统的开始按钮,软件记录大鼠1h内每5min的右足抖动的次数.结果:各组行为表
2020-09-03 vgv17614350 379
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镇痛药物实验热板法（大鼠）
原理：捉持大鼠让大鼠的后足足底接触热板，大鼠受热刺激而产生明显的后抽动作做为疼痛的反应指标，以产生痛反应所需的时间（潜伏期）为痛阈值，通过测量给药大鼠痛阈值的改变（潜伏时间的长短）而反映药物的镇痛作用。材料：动物 大鼠，器材 YLS-6B智能热板仪、注射器、生理盐水、盐酸**。方法：①打开热板仪，将温度设定到52℃±0.2℃，温度到达后即可进行实验。②拿掉热板仪上的有机玻璃罩，一手捉鼠一手拿其后足
2020-09-03 vgv17614350 327
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强迫游泳实验方法
强迫游泳实验实验用品的准备：小勺（用于捞实验动物粪便）实验前的准备：1.在实验前一天晚上，把强迫游泳桶和实验室打扫干净。A.强迫游泳桶中动物粪便要处理干净b.实验室内保证通风、无异味2.将水注入强迫游泳中，水的高度大约为20CM左右（参考：大鼠：30CM；小鼠：20CM）。如果水温过低，请使用快速热水器加热水至合适温度（参考温度：22± 1℃）注入强迫游泳桶中。3.实验前三十分钟把动物带入实验室中
2020-09-03 vgv17614350 149
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生理学实验室常用实验仪器
（一）电极1．普通电极：多用银丝或不锈钢丝制成，一般将一条或两条金属丝镶嵌在有机玻璃或硬塑框套内，刺激端裸露，作为细胞外刺激用。2．保护电极：保护电极的绝缘框套在刺激端弯曲成钩状，金属丝包埋其中，金属丝仅保留沟内一面裸露，以便施加刺激时，保护其周围的组织免受刺激。3．锌铜弓：在生理学实验中，锌铜弓是检验标本机能活性最常用而简易的刺激器。由铜片和锌片两种金属制成。最早由Calvani所创造，故称Ca
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小动物跑台运动实验规程
1、购进的大小鼠首先在实验室进行一周左右的生活环境的适应性饲养。 2、第二周进行跑台适应性运动训练 通常跑台慢速运动,设定速度为15-20米/分钟;把鼠放入舱内一分钟后,施加电刺激,刺激电压调至65伏左右,刺激频率随意。 小鼠受电刺激后会马上跳上移动跑台台面,朝跑台相反方向移动。如果跳到台面上的鼠不跑,会被传送带带入电刺激区再次受电刺激击打,它又会跳上传送带奔跑。 奔跑训练每天一次,每次十
2020-09-03 vgv17614350 143
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多功能诱咳引喘仪动物吸入量简单计算方法
以重量500g豚鼠为例，豚鼠平均每分钟呼吸90次，每次吸入量为1ml左右，一分钟吸入90ml×0.035‰=0.00315ml=3.15μl因容器内药物浓度是由0渐变增加，所以动物在喷药时间内实际吸入量应乘50%。停喷药后动物吸入量应乘100%。
2020-09-03 vgv17614350 133
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离体心脏灌流技术及其解决方案
应用背景 离体心脏灌流技术的发展，极大的推动了心脏生理学和药理学的发展，构建了心脏研究的基础工作。该技术发展以来具有了众多的应用和变化，本篇文章综述了离体心脏灌流技术的发展和优劣，提供了一种独特的心脏灌流解决方案以及使用案例。19世纪中后期，离体心脏灌流技术最早出现于Elias Cyon对蛙心的离体灌注实验，后由Oscar Langendorff完善和发展，目前应用最广泛的灌流技术——Langen
2023-04-10 vgv17614350 111