• T迷宫-学习记忆的行为学研究方法

    T迷宫-学习记忆的行为学研究方法近半个世纪前,Kivy和Dember等人证明大鼠能辨别T-形迷宫(T-maze)两臂颜色的变化。他们发现,将雄性大鼠置于T-形迷宫的主干臂15~30min,让其能看见、但不能进入黑白两臂。然后,改变其中一个臂的颜色,使两臂同为黑色或白色。让大鼠自由选择T-形臂。结果显示,大鼠总是选择改变了颜色的那个臂(新异臂)。这一过程要依靠动物的记忆来完成。由此发展而成的T-形迷

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  • 大鼠无创血压测定方法

    工作原理:工作原理与用普通人体血压计量人体动脉血压的克氏音原理类似。高敏脉搏换能器能感受动脉血流量变化而产生的强弱不同的血管搏动,经换能和放大处理,可通过多种记录显示系统描记出血管搏动曲线。用充气方式人为改变压脉套内压力,对动脉实施压迫(阻断血流)和松解(恢复血流)。当尾套内压力处于动脉血流从完全阻断到心脏射血能使动脉血流开始贯通时,此时脉搏波从消失到再次出现第一个波,此波出现时所对应的压力表上指

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  • 常见动物实验中实验动物的选择

    一、药理学研究中的选择1、临床药物代谢动物学研究:首选动物及性别,应尽量与药效量或毒理学研究所用动物一致。药物动力学参数测定:最好使用犬、猴子等大动物,可在同一动物上多次采样。药物分布实验:大、小鼠较方便。药物排泄试验:一般首选大鼠,胆汁采集可在乙醚麻醉,胆管插管引流。2、一般药理研究主要药效作用以外广泛药理作用的研究。动物:小鼠、大鼠、猫、犬等性别不限。3、作用于神经系统的药物研究:促智药:成年

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  • 家兔和豚鼠心脏取血法

    将兔仰卧固定在手术台上,把左侧胸部相当于心脏的部位的被毛剪去,用碘伏、酒精消毒皮肤。实验者用左手触摸左侧第3-4肋间,选择心跳最明显处作穿刺。一般由胸骨左缘外3mm处将注射针头插入第三肋间隙。穿刺时最好用左手触诊心跳,在触诊的配合下穿刺。 经6-7天后,可以重复进行心脏穿刺术。家兔一次可采取全血量的1/6-1/5。

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  • 大小取血法

    大小鼠断头取血法用大鼠断头器或粗剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉,实验者立即将鼠颈向下,提起动物,对准准备好的容器,鼠血即可从颈部滴入容器内。大小鼠尾静脉方法将鼠尾在温水中浸泡2分钟,待静脉充分充血后,用剪刀剪去尾尖或挑取尾静脉,尾静脉知即可流出,用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下,可以取到数滴血。大小鼠眼眶动脉和静脉取血用左手抓住鼠,拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧,使鼠眼球突出。右手取一无钩弯小镊,在鼠右侧眼

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  • Y形迷宫电刺激实验流程

    以MG-3Y形迷宫为例1) 实验开始时,让大鼠在起步区(大鼠开始所在的臂) 适应3~5 min ,然后按顺时针方向变换安全区与电击区的位置,2) 当安全区信号灯亮起5秒后,即给起步区、非安全区加电,而安全区不加电,当大鼠被电击后,跑至安全区后结束一次训练。3) 上一次训练结束后原来的安全区5秒后的变为下一次训练的起步区,重复上一训练过程。直到5分钟结束,得到5分钟内训练次数,正确次数、潜伏期、错误

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  • 小动物跑台运动实验规程

    1、购进的大小鼠首先在实验室进行一周左右的生活环境的适应性饲养。  2、第二周进行跑台适应性运动训练  通常跑台慢速运动,设定速度为15-20米/分钟;把鼠放入舱内一分钟后,施加电刺激,刺激电压调至65伏左右,刺激频率随意。  小鼠受电刺激后会马上跳上移动跑台台面,朝跑台相反方向移动。如果跳到台面上的鼠不跑,会被传送带带入电刺激区再次受电刺激击打,它又会跳上传送带奔跑。  奔跑训练每天一次,每次十

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  • 恐惧和焦虑的神经生物学研究

    害怕是面临威胁性情境时的情绪反应,当害怕显著超过了应有的程度时称为恐惧;在无现实威胁时,感到的害怕或担心则称为焦虑。过去曾经认为情绪很难用神经科学的方法探讨,而现在情绪已成为神经科学的一个热门研究课题。对恐惧和焦虑的神经通路及发生机制的研究已获得很大进展。这类研究是在经典条件反射的基础上,采用了新的研究方法,例如,用微电凝和微量药物注射,引起某一特殊神经结构的限局性损害,然后观察其相关的行为效应,

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